Если мой сайт помог вам в подготовке к экзаменам вы можете отправить ссылку своим друзьям биологам.  Это сделает ресурс лучше!

Vinaora Nivo Slider 3.xVinaora Nivo Slider 3.xVinaora Nivo Slider 3.xVinaora Nivo Slider 3.xVinaora Nivo Slider 3.xVinaora Nivo Slider 3.xVinaora Nivo Slider 3.xVinaora Nivo Slider 3.x

Взятие венозной крови производится натощак, в утренние часы. При взятии венозной крови необходимо учитывать ряд факторов, которые могут повлиять на результат гематологических исследований: физическое перенапряжение (бег, быстрая ходьба, подъем по лестнице), эмоциональное возбуждение, прием пищи накануне исследования, купание, прием алкоголя и т.д. Для исключения этих факторов, следует соблюдать следующие условия подготовки пациентов:

  • взятие венозной крови осуществляется после 15-минутного отдыха, обследуемого;
  • пациент во время взятия сидит, у тяжелых больных взятие крови может осуществляться лежа.

Курение, прием алкоголя и пищи непосредственно перед исследованием исключаются.

Основной способ взятия венозной крови для лабораторного исследования – пунктирование вены. Венозную кровь, как правило, забирают из локтевой вены. В случае необходимости ее можно получить из любой вены (запястья, тыла ладони, над большим пальцем и т.д.). У новорожденных и грудных детей кровь обычно берется из лобной, височной или яремной вены.

При взятии крови из вены необходимо избегать:

  • мест шрамов, гематом;
  • вен, используемых для переливания растворов;
  • ножных вен (у больных диабетом, при нарушениях периферического кровотока, ангиопатиях).

Оборудование

Для венепункции можно использовать три варианта пункционных систем:

  • одноразовые пластиковые системы (вакутейнеры), состоящие из контейнера с навинчивающейся на него одноразовой иглой и пробирки с плотно прилегающей пробкой и вакуумом внутри;
  • одноразовые шприцы с подходящим диаметром иглы;
  • иглы с внутренним диаметром 0,55-0,65 мм.

Условия получения капиллярной крови.

Капиллярная кровь происходит из артериол, венул и капилляров и содержит как артериальную, так и венозную кровь, и межклеточную жидкость. Артериальная часть в капиллярной крови преобладает. Капиллярную кровь у взрослых получают, как правило:

  • из ладонной поверхности пальцев рук,
  • мочки уха,
  • у детей – из боковой поверхности пятки или подошвенной поверхности большого пальца ноги, или мочки уха.

Глубина прокола 2—3 мм. Кожа в месте прокола должна быть сухой, розовой и теплой. Холодная кожа должна быть осторожно согрета легким массажем и теплой водой. Отечные области не используются для взятия крови,

Оборудование:

  • одноразовые ланцеты или специальные иглы для взятия капиллярной крови;
  • пробирки со специальным силиконовым покрытием или антикоагулянтом;
  • предметные стекла;
  • пипетки;
  • капилляры;
  • ватные или марлевые тампоны;
  • спирт 70%.

Обследуемый либо сидит, либо лежит. Его положение должно быть удобным, рука или другое место взятия должно быть стабилизировано. Вначале тампоном со спиртом тщательно протирается поверхность кожи для того, чтобы удалить грязь и частицы, которые могут быть сосчитаны как фрагменты клеток крови. После высыхания кожи (несколько секунд) и восстановления кровообращения кожа прокалывается ланцетом или специальной иглой для взятия крови. Первая капля крови удаляется сухой стерильной ватой, так как содержит кусочки поврежденной ткани. Вторая капля используется для исследования. Пункция должна быть такой, чтобы формировалась свободно натекающая капля. Кровь не должна выдавливаться. Во время взятия строго соблюдаются правила асептики. Существуют 4 способа взятия капиллярной крови:

  • После прокола кожи пальца несколько капель крови (не менее 3—4) помещают на индивидуальное предметное стекло или гнездо пластикового планшета, перемешивают и используют для работы.
  • Кровь набирают в индивидуальные, стерильные, предварительно выверенные пипетки или капилляры непосредственно с поверхности кожи проколотого пальца больного.
  • Кровь в количестве 40 мкл набирают стерильным индивидуальным капилляром Панченко, предварительно смоченным стерильным раствором цитрата натрия (соотношение крови и цитрата 4:1 по объему).
  • После прокола кожи 6—8 капель крови осторожно спускают в пластиковую пробирку с предварительно помещенным в нее 7.5% раствором (Nа2ЭДТА) – 1 капля (4—7 мкл). Содержимое пробирки тщательно перемешивают, вращая ее между ладонями.

После получения необходимого количества крови, необходимо протереть поверхность кожи тампоном, смоченным спиртом, оставив затем чистый тампон на пальце (или другой поврежденной поверхности) на 1—2 минуты до полной остановки кровотечения.

Глубина прокола должна быть достаточной (2—3 мм).

Давайте вместе сделаем данный сайт лучше! Поделитесь ссылкой на этот сайт со своими одногрупниками. Это поможет развитию нашего сайта.

2015 - 2021 © Биология для студентов | При использовании материалов сайта - прямая ссылка на VseoBiology.ru обязательна.

^ Наверх